Дерматофития («стригущий лишай») – как диагностировать и лечить в условиях каждой ветеринарной клиники.

О  грибах

Грибы присутствуют повсеместно в нашей окружающей среде. Из тысяч различных видов грибов только немногие обладают способностью вызывать заболевания у животных. Подавляющее большинство грибов являются либо почвенными организмами, либо патогенами растений. Однако описаны более 300 видов грибов, которые могут быть патогенами.

Место в классификации

В природе существует пять Царств: Monera (бактерии и сине-зеленые водоросли), Protista (простейшие), Грибы (Fungus), Plantae (растения) и Animalia (животные).  Грибы являются эукариотами, не содержат хлорофилл, могут расти в форме дрожжей (одноклеточных организмов), плесени (многоклеточных волокнистых  организмов) или иметь смешанный  тип роста.  Клеточные стенки грибов состоят из хитина, хитозана, глюкана и маннана.  

Царство Грибов включает пять подцарств: Chytridomycota, Zygomycota, Basidiomycota, Ascomycota, а также Fungi Imperfecti или Deuteromycota.

Для обозначения разных «частей» грибов, используют специальные термины:

• Гифа - нитевидное образование  грибов, состоящее из многих клеток.               
• Мицелий - это множество гифов.
• Септы - разделения между клетками внутри гифов.  
• Конидии – неподвижные споры бесполого размножения у грибов (типы конидий: бластоконидии, артроконидии, аннелоконидии, фиалоконидии, пороконидии и алуриконидии).
• Конидиофор - мицелий, на котором расположены конидии.

Сапрофитные грибы поверхности кожи собак и кошек

На поверхности кожи и шерсти у собак и кошек можно обнаружить целый  ряд грибов. У собак чаще выделяют: Alternaria, Aspergillus, Aureobasidium, Chrysosporium, Cladosporium, Mucor, Penicillium и Rhizopus. У кошек - Alternaria, Aspergillus, Chrysosporium, Cladosporium, Mucor, Penicillium, Rhodotorula и Scopulariopsis.    Большинство из этих сапрофитных грибов чаще всего представляют собой контаминацию из воздуха или из почвы. Их присутствие в большинстве случаев не вызывает развития заболеваний.

Микоз, дерматофитоз, дерматомикоз. В чем разница

Для того чтобы иметь представление о характере грибковой инфекции,  используют ряд определений:

Микоз  -  заболевание, вызванное грибом вообще.

Дерматофитоз  -  инфекция кератинизированных тканей (ногти, волосы, роговой слой кожи).  Вызывается дерматофитами, такими как Microsporum, Trichophyton или Epidermophyton. Отличительной чертой дерматофитов является то, что для их выживания обязательно нужен белок кератин.    

Дерматомикоз  - грибковая инфекция шерсти, когтей или кожи, вызванная недерматофитами - грибами, которым не обязательно использовать  кератин для своей жизнедеятельности.      

Дерматофиты, вызывающие проблемы у собак и кошек

Дерматофитами, наиболее часто инфицирующими животных, являются Microsporum и Trichophyton. На основании естественной среды обитания их можно разделить на три группы на: геофильные, зоофильные и антропофильные.

            Геофильные дерматофиты (M. Gypseum) обычно населяют почву, в которой они разлагают кератиновый дебрис.

Зоофильные дерматофиты (M. canis, Microsporum distortum и Trichophyton equinum) адаптировались к животным и только редко обнаруживаются в почве.  

Антропофильные дерматофиты (Microsporum audouinii) адаптировались только  к людям и не могут  выживать в почве.

Огромное множество клинических случаев дерматофитоза у собак и кошек вызывают три гриба: M. canis (чаще передается при контакте между жиивотными); M. gypseum (при контакте с почвой) и  T. mentagrophytes (при контакте с грызунами). Для удобства типирования этих грибов-дерматофитов врачам-практикам  можно пользоваться следующим электронным адресом:  http://www.mycology.adelaide.edu.au/Fungal_Descriptions/Dermatophytes    

Микроспория - наиболее частая клиническая проблема

Справедливости ради, следует отметить, что к «рекордсменам», с точки зрения частоты формирования клинических проблем, с которыми сталкивается   практикующий врач, по праву можно отнести микроспорию. В течение нескольких лет практики, к сожалению (а может быть и к счастью), помимо микроспории, мы не имели  возможности видеть иных дерматофитных инфекций,  поэтому детально остановимся на разборе клинической проблемы, связанной с микроспорией.

Микросприя - это дерматофитоз, и он, как правило, поверхностный, то есть  поражает волосы и роговой слой эпидермиса, реже – когти. Однако есть исключения, но они крайне редки, связаны с проникновением гриба в глубокие слои кожи и формированием так называемой дерматофитной псевдомицетомы (об этом ниже). 

Пути передачи  микроспории

Эти дерматофиты передаются при контакте с зараженной шерстью и чешуйками или элементами грибов на животных. Гребни, щетки, ножницы, подстилки, транспортные клетки и другие личные вещи, связанные с грумингом, передвижением и размещением животных, - все они являются потенциальными источниками инфицирования и повторного инфицирования. M. canis можно высеять из пыли, нагревающих воздуховодов и фильтров обогревателей.Посетители кошачьих приютов и домов с большим количеством кошек могут переносить грибы. Кошки могут иметь бессимптомное течение болезни.

В рамках одного исследования с полов 50 частных ветеринарных клиник в 30% случаев были культивированы грибы M. canis. Таким образом, ветеринарные клиники тоже могут быть источником инфекции. 

Устойчивость во внешней среде

По литературным данным, в случае  M. Canis - волосяные стержни, содержащие инфекционные артроспоры, могут оставаться способными к заражению во внешней среде в течение 1,5 лет. А мои коллеги, использующие зараженные волосы для возможности получить рост колоний, отмечали рост дерматофитов M. canis спустя  несколько лет.      

Некоторые особенности развития   инфекции

Предполагается, что для развития инфекции важна фаза роста волоса. Инфицирование волоса начинается и продолжается в фазу анагена. В фазе телогена может произойти спонтанное излечение. Также считается, что  самоизлечение может наступить в виду развития воспалительной реакции. Именно в этой связи дерматофития считается самоизлечивающимся заболеванием. Впрочем, артроспоры могут оставаться на волосяном стержне, однако повторное инфицирование конкретного этого волосяного фолликула  наступит вновь только после того, как опять начнется фаза анагена. 

Диагностика микроспории

Диагностика включает в себя  несколько аспектов:

• клинические  данные
• эпизоотологические данные
• эпидемиологические данные
• ЛЮМ – диагностику
• прямую микроскопию волос (трихограмму)
• посев на питательные среды
• биопсию (при необходимости) 

Клинические данные

Классическое проявление микроспории у собак и кошек связано с наличием округлых алопеций. Кожа может шелушиться, на ней обнаруживаются корки, фолликулярные папулы и пустулы. Иногда отмечается зуд, это связано с особенностью грибов выделять ферменты. Так, M. canis обладает многочисленными ферментативными свойствами и, в частности, вырабатываемый фермент кератиназа способствует появлению воспаления и зуда.     

У кошек может быть как носительство или бессимптомное течение болезни, так  и   формы с минимальными клиническими данными, указывающими на дерматофитию.

Безусловно, диагноз микроспория (или любая друга дерматофития) не может  устанавливаться только на основании клинических данных, поскольку любая форма фолликулита клинически будет походить на данную проблему. 

Эпизоотологические данные

Когда на приеме мы видим кошку или собаку, у которых можно подозревать микроспорию, важно выяснить, не было ли предварительного контакта у животного на выставках, не находилось ли оно в передержках, например,  на период  отпуска владельцев. Если  животное подобрано либо поступает к нам из приюта или из питомника, то подозрение в отношении возможного заболевания  усиливается. 

Эпидемиологические данные

Все наши лечебные и профилактические меры  направлены на предотвращение возможности заражения владельцев от своих питомцев. В клинической практике, когда речь идет о микроспории, мы зачастую слышим  жалобы от владельцев на наличие у них  на коже округлых поражений, которые могут шелушиться и  сопровождаться зудом. Бывают случаи, когда животное явно болеет, а у владельца нет поражений на  коже, в этой ситуации важно предупредить владельцев о необходимости соблюдения минимального контакта с питомцем в течение периода проведения терапии у него.

Однако бывают и такие случаи, когда у владельцев медицинскими дерматологами подтвержден диагноз «микроспория», а животное при этом может и не болеть. Обычно это происходит, когда у владельца имел место контакт с больным животным вне дома. В данном случае мы назначаем превентивную терапию домашнему животному и рекомендуем обработку внешней среды, поскольку риск дальнейшего перезаражения остается значительным. 

ЛЮМ – диагностика

Если мы видим люминесцентное свечение пораженных волосков, используя Лампу Вуда, это позволяет целенаправленно забрать их для прямой  микроскопии и для посева. Но, к сожалению, этот метод достоверен только в 50% случаев. 

Трихограмма

Прямая микроскопия волоса является значимой для постановки диагноза «микроспория». Мы видим типичные волоски, разрушенные дерматофитом. В литературе описаны  различные методы такой микроскопии.

Наиболее частой  рекомендацией советского периода, которую можно увидеть в институтских методичках, было применение такого метода, при котором волос помещался в раствор с КОН, а затем подогревался над горелкой, что предполагало его разрушение, а споры таким образом попадали в раствор щелочи. Метод трудоемкий и не совсем безопасный. Одна моя коллега рассказывала, что когда на кафедре одной из ветеринарных академий  они занимались такими исследованиями, то поражения грибами у сотрудников были даже на коже лица. Это, по-видимому, было связано с тем, что споры попадали в окружающий воздух из-за нагревания, а оттуда - на кожу исследователей. 

Некоторые источники рекомендуют для контрастирования спор использовать различные красители, вплоть до люминесцентных. Это, очевидно, дорогостоящие методы. И они не могут быть рутинными.  

Практика врача предполагает простой метод микроскопии подозрительных волосков при увеличении микроскопа в 40 раз. Если поле немного затемнено и при этом работать микровинтом, то хорошо видны споры грибов-дерматофитов.  

Посев на питательные среды

В ветеринарной практике используют посев на питательную среду Сабуро и среду ДТМ. 

Среда Сабуро представляет собой агар, часто обогащенный компонентами, препятствующими  росту колоний микроорганизмов. Обычно колонии растут в течение 14 дней. Они пышные и имеют серовато-белый цвет. Трудно по виду колоний определить их принадлежность к  M. Canis, поэтому важно исследовать сами колонии. Для этого надо на скотч поместить  материал, окрасить его в синий цвет любым подходящим красителем и провести микроскопию. По характерному виду макроконидий, которые имеют (как правило) 6-7  септ, можно подтвердить диагноз микроспория. 

Последнее время на рынке появились коммерческие пробирки для ветеринарии со средой ДТМ. Это селективная среда, по изменению окраски которой с желтоватого цвета до красного в период роста дерматофитов можно предположить наличие инфекции. Окончательный диагноз можно установить только посредством микроскопии колонии при обнаружении характерных макроконидий. 

Достоинство среды в том, что мы видим ее красную окраску, так как растущие дерматофиты, питаясь сначала белками, находящимися в среде, меняют ее рН. Важно не пропустить этот момент, который возникает тогда, когда мы видим начало роста колонии. Однако необходимо помнить, что и иные грибы тоже могут менять цвет среды, тем самым вводить нас в заблуждение. В нашей практике был прецедент, когда среда ДТМ меняла свой цвет при росте контаминирующего кожу гриба Aspergillus.

Именно микроскопия колонии является основным диагностическим аспектом, когда мы видим макроконидии. А в баночку с маленькой крышкой (именно в таком виде продавцы предлагают среду ДТМ) поместить клейкую ленту для отпечатка колонии, является довольно трудной задачей. Наконец, ДТМ в несколько раз дороже «обычной» среды Сабуро. Именно последнюю среду, не содержащую индикаторов, мы и предпочитаем в нашей практике  для выращивания  колоний дерматофитов.   

Биопсия

Биопсия важна в тех случаях, когда мы сталкиваемся с керионом при дерматофитии или дерматофитной псевдомицетомой у персидских кошек, или когда речь идет о наличии милиарного дерматита с подозрением, что он вызван дерматофитами, а посевы у нас отрицательные (особенно в случае наличия тех или иных данных «за» дерматофитию, например: эпизоотологических или эпидемиологических).   

Иные методы диагностики микроспории

Поскольку микроспория - зоонозная инфекция, встречающаяся у людей, а ни один из методов, которые обсуждались выше, не являются 100% надежными, то возбудителя пытаются определять, изучая ферменты, которые он выделяет. В некоторых зарубежных центрах используют  ПЦР - диагностику как рутинный экспресс-метод выявления дерматофитной инфекции у людей.   

Терапия микроспории 

Системная терапия дерматофитии: концепция ее применения

В практике редко можно встретить керион или псевдомицетому, которые требуют агрессивной терапии озолами. А в случае псевдомицетомы у персидских кошек не следует пренебрегать и хирургическим лечением. При этом прогнозы на выздоровление могут быть осторожными. В нашей практике мы в основном встречаем обычный классический вариант течения дерматофитии, поэтому чаще всего используем терапию озолами или тербинафином. 

Препараты для системной терапии:

Гризеофульвин - противогрибковый антибиотик, выделен из Penicillium griseofulvum.

ДЕЙСТВИЕ: Фунгистатик,  ингибирует синтез клеточной стенки, нуклеиновых кислот, и митоз. 

ФАРМАКОКИНЕТИКА: Абсорбция усиливается при кормлении жирной пищей.   Существует две формы: микрокристаллическая и ультрамикрокристаллическая (в 2-4 раза более  биологически доступна). Важно знать эту разницу, иначе может возникнуть  токсичность. 

ПОКАЗАНИЯ: Эффективен только против дерматофитов (Trichophyton, Microsporum).

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ: Печеночная дисфункция, беременность, ретровирусные инфекции кошек,  анемия, лейкопения.

ДОЗИРОВКА:  Собаки: микронизированный препарат 25 мг/кг каждые 12 часов, ультрамикронизированный препарат - от 5 до 10 мг/кг каждые 24 часов.

Кошки: микронизированный препарат 50 мг/кг каждые 24 часа или 25 мг/кг каждые 12 часов; ультрамикронизированный препарат - от 5 до 10 мг/кг каждые 24 часа.

Дают с жирной пищей или кукурузным маслом для усиления всасывания и снижения раздражения кишечника.

ПОБОЧНЫЕ ЭФФЕКТЫ: Тошнота, рвота, диарея, гепатотоксичность, тератогенность, препятствует сперматогенезу, зуд, отек дермы, нейротоксичность (атаксия, дезориентация, обычно ассоциируется с передозировкой), идиосинкразическая миелотоксичность (анемия, лейкопения и/или тромбоцитопения; идиосинкразические реакции возникают независимо от дозировки).

МОНИТОРИНГ: Не использовать у кошек, которые заражены ВИК (вирусным иммунодефицитом) или  ВЛК (вирусным лейкозом)!!!  Оценивать общий анализ крови (ОАК) каждые 2 недели во время лечения! 

Производные Азолов

Кетоконазол - противогрибковый имидазол.

ДЕЙСТВИЕ: Противогрибковое. Нарушает синтез эргостерола в стенках клеток грибов путем ингибирования цитохрома P450 14α-деметилазу. Ингибирует  поглощение  пурина и нарушает биосинтеза триглицеридов и фосфолипидов.      

ФАРМАКОКИНЕТИКА: Всасывание усиливается при введении вместе с жирами и небольшими количествами пищи. Высокие концентрации достигаются в печени, почках, гипофизе и надпочечниках. Выделяется с мочой, потом, кожным салом, ушной серой, слюной и молоком. Метаболизируется в печени до неактивных метаболитов, которые выделяются с желчью и фекалиями. Может потребоваться от 10 до 14 дней лечения до достижения устойчивого уровня и эффективных терапевтических концентраций в коже.

ПОКАЗАНИЯ: Противогрибковое средство: дерматофитоз собак,  малессезионный дерматит, локализованный или диссеминированный кандидоз, бластомикоз, гистоплазмоз, кокцидиомикоз и криптококкоз. Не рекомендуется для использования при лечении дерматофитоза кошек (предпочтительно использование гризеофульвина, итраконазола или флюконазола). Одновременно его использовали  с циклоспорином для уменьшения скорости выведения и снижения  требуемой дозы циклоспорина, таким образом, снижая стоимость лечения. Не является препаратом первого выбора для животных с заболеваниями центральной нервной системы  или глаз.

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ: Беременность, лактация; дисфункция печени, тромбоцитопения. Осторожно применять/не применять при приеме лекарств, метаболизирующихся ферментами P450. Следует избегать использования вместе с митотаном, рифампином и теофиллином. 

ДОЗИРОВКА: Собаки: дерматофитоз - 10 мг/кг каждые 24 часа.                                                 Кошки: не рекомендуется для использования у кошек из-за высокой частоты побочных эффектов (потеря аппетита, потеря веса, гепатотоксичность).

ПОБОЧНЫЙ ЭФФЕКТЫ:  Анорексия, рвота, диарея, боли в животе, потеря веса, лихорадка, депрессия, гепатотоксичность (гепатоклеточный некроз), тромбоцитопения, нерегенеративная анемия, тератогенный эффект, снижение синтеза кортизола и тестостерона у собак, снижение либидо, гинекомастия, азооспермия, импотенция, анэструс, зуд, потеря шерсти, осветление шерстяного покрова, связанное с потерей остевых волос, а также катаракта после длительной терапии у собак.

МОНИТОРИНГ: Сывороточные уровни печеночных ферментов (аланинаминотрансферазы, щелочной фосфатазы), билирубина, а также желчных кислот следует оценивать до начала лечения и во время терапии (каждые 2-4 недели). 

Итраконазол -синтетический триазоловый противогрибковый препарат.

ДЕЙСТВИЕ: Ингибирует цитохром P450 14α-деметилазу, предотвращая синтез эргостерола в клеточной мембране гриба; слабо связывается с P450 млекопитающих.

ФАРМАКОКИНЕТИКА: Биологическая доступность составляет (приблизительно) 40% натощак, повышается при введении вместе с пищей и кислом значении pH в желудке. Плохо проникает в ЦНС или ткани глаз. Препараты для орального введения требуют 14-21 дней для достижения равновесного состояния у собак и кошек.  Метаболизируется в печени на неактивные метаболиты, которые выводятся с желчью и мочой.

ПОКАЗАНИЯ:  Дерматофиты, Malassezia, кандидоз, бластомикоз, гистоплазмоз, аспергиллез (низкая эффективность против назальной формы), криптококкоз, споротрихоз, зигомикоз, хромомикоз, онихомикоз, а также простейшие Leishmania и Trypanosoma. По сравнению с кетоконазолом  обладает усиленной мощностью, сниженной токсичностью и более широким спектром действия.

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ:  Заболевание печени или печеночная недостаточность.   Продлевает эффекты и повышает токсичность бензодиазепинов (мидазолама), циклоспорина, глюкокортикоидов, антигистаминных препаратов, хинидина, дигоксина, винкристина, варфарина, сульфонилуреазы. Противопоказан одновременно с антацидами, H₂ -блокаторами и антихолинэргиками.

ДОЗИРОВКА:  Собаки: 5-10 мг/кг каждые 12-24 часов.                                                              Кошки: 5 мг/кг каждые 12 часов или 10 мг/кг каждые 24 часа. Для кошек и мелких собак капсулы можно вскрыть и гранулы смешать с пищей. Дозировку можно сократить на 25%-50% при использовании суспензии для орального применения без пищи. Пульс-режимы дозирования можно использовать при лечении поверхностных грибковых инфекций. При лечении дерматофитоза использовали дозировку 5 мг/кг в течение 7 дней через неделю.     

ПОБОЧНЫЕ ЭФФЕКТЫ: Рвота, диарея, боль в животе, потеря аппетита, повышение уровень печеночных ферментов в сыворотке (ALT и ALP), повышение азота мочевины в сыворотке, периферический отек, лихорадка, повышенное давление, кожная сыпь, периферический отек и язвы из-за кожного васкулита (наиболее часто встречается у собак, получающих более 10 мг/кг/день два раза в день). Может быть тератогенным, и его не следует использовать у беременных или кормящих животных.   

МОНИТОРИНГ: Уровень печеночных ферментов следует отслеживать каждые 2 недели, и прекращать введение лекарства при развитии каких-либо побочных эффектов. Можно снова  попробовать начать лечение при 50% снижении дозы после исчезновения побочных эффектов.  

Флюконазол- Бис-триазол.

ДЕЙСТВИЕ: Противогрибковое; игибирует синтез стерола и цитохрома P450. Более высокая аффинность к ферментам грибов, чем у кетоконазола и  итраконазола.

ФАРМАКОКИНЕТИКА: Высокая биологическая доступность (>90%), на всасывание в ЖКТ не влияет прием пищи или изменения значения рН в желудке. Хорошо проникает в ЦНС и ткани глаз, независимо от наличия воспаления.  Метаболизируется не интенсивно; изначально выводится при почечной экскреции активного лекарственного препарата.   

ПОКАЗАНИЯ: Великолепный препарат против дрожжей, включая Cryptocococcus,  Blastomyces, Histoplasma, Coccidioides, Malassezia, Candida; переменное действие против мицелиальных грибов, таких как Aspergillus и дерматофиты.

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ: Дозировка снижается при почечной недостаточности; следует избегать использования у беременных животных. Цимитидин может препятствовать всасыванию. Усиливает активность антикоагулянтов, тиазидных диуретиков, рифампина, циклоспорина, глипизида, антигистаминов, дифенилгидантоина и теофиллина.   

ДОЗИРОВКА: Собаки: 2.5-5 мг/кг каждые 12-24 часов. Кошки: 5-10 мг/кг каждые 12-24 часа.    

ПОБОЧНЫЕ ЭФФЕКТЫ: Рвота, диарея, дискомфорт в животе, кожная сыпь, гепатотоксичность (встречается реже, чем при применении кетоконазола и итраконазола). Не подавляет гормоны надпочечников или половые гормоны. 

МОНИТОРИНГ: Оценивается уровень ферментов печени до - и ежемесячно во время проведения лечения.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ:  В  одном исследовании in vitro 30 изолятов M. canis было обнаружено, что все 30 являются устойчивыми к флюконазолу. 

Тербинафин - Аллиламин.

ДЕЙСТВИЕ: Ингибирует биосинтез эргостерола и эпоксидазы сквалена, что приводит к дефициту эргостерола в клеточной стенке гриба и внутриклеточного накопления сквалена. Тербинафан обладает фунгистатическим и фунгицидным действием, поскольку он в основном не является ингибитором систем цитохрома P450. Является более селективным, чем азолы.  

ФАРМАКОКИНЕТИКА: Всасывание усиливается при введении с жирной пищей. Высоко липофильный и кератинофильный. В высоких концентрациях находится в поте, кожном сале, коже, ногтевых ложах и шерсти. Метаболизируется печенью и выводится с мочой. Местные препараты имеют минимальную всасываемость (<5%). У людей терапевтические дозы тербинафана находятся в коже в течение 2-3 недель, в ногтях - в течение 2-3 месяцев.

ПОКАЗАНИЯ: Дерматофиты, аспергиллез, проявляет некоторую активность против Sporothrix (используется в комбинации с интраконазолом), Pythium (используется в комбинации с интраконазолом) и системных грибов. Также эффективен для лечения Malassezia pachydermatis.

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ: Дозировку снижают при почечной и/или печеночной недостаточности. Можно использовать во время беременности. Есть некоторые взаимодействия с другими препаратами (циметидин увеличивает концентрацию в крови, тогда как рифампин ее снижает).   

ДОЗИРОВКА: Собаки: 20-30 мг/кг каждые 12-24 часа при дерматофитозе (и назальном аспергиллезе). Кошки: 20-40 мг/кг каждые 24-48 часа при дерматофитозе; 8.25 мг/кг каждые 24 часа при лечении носителя дерматофитов.

ПОБОЧНЫЕ ЭФФЕКТЫ: Анорексия, рвота, диарея, боль в животе, гепатотоксичность (застой желчи, повышение  печеночных ферментов), нейтропения, панцитопения.

МОНИТОРИНГ: Наблюдение за уровнем ферментовпечени до лечения и каждые 2-4 недели во время лечения. 

Иммунотерапия при грибковых инфекциях                         

Вакцины для профилактики и/или лечения дерматофитных инфекций у кошек и собак продемонстрировали минимальную эффективность, хотя разработка таких вакцин является областью исследования (1. DeBoer DJ, Moriello KA: The immune response to Microsporum canis  induced by a fungal cell wall vaccine. Vet Dermatol 5:47, 1994.  2. DeBoer DJ, Moriello KA: Investigations of a killed dermatophyte cell-wall vaccine against infection with Microsporum canis in cats. Res Vet Sci 59:1100, 1995.  3. DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JF, et al: Safety and immunologic effects  after inoculation of inactivated and combined live-inactivated dermatophytosis  vaccines in cats. AmJVetRes63:1532–1537, 2002). 

Местная терапия дерматофитии

Включает в себя два варианта: 1)очень хороший  -  использование 2% раствора сернистой извести 1 раз в неделю. Не является токсичным для маленьких котят, может использоваться для монотерапии. 2) имаверол (энилконазол) - его  раствор желательно использовать 1 раз в 3-4 дня. Он также абсолютно безопасен для маленьких животных.  

Контроль терапии

Контроль терапии осуществляется посредством посевов с интервалом 1 раз в 7-14 дней. При наличии двух отрицательных посевов – лечение завершено успешно. 

Литература

1. Aho R: Studies on fungal flora in hair from domestic and laboratory animals suspected of  dermatophytosis. I. Dermatophytes. Acta PatholMicrobiol Scand [B] 88(2):79–83, 1980.
2. Aho R: Saprophytic fungi isolated from the hair of domestic and laboratory  animals with  suspected dermatophytosis. Mycopathologia 83(2):65–73, 1983.
3. Bourdzi HE: Study of canine ringworm epidemiology in Thessaloniki area. Bull Hellenic Vet Med Soc 48:87, 1997.
4. Cabanes FJ, Abarca ML, Bragulat MR: Dermatophytes isolated from  domestic animals in Barcelona, Spain. Mycopathologia 137(2):107–113, 1997.
5. Cabanes FJ, et al: Seasonal study of the fungal biota of the fur of dogs. Mycopathologia 133:1, 1996.
6. Carter GR, Cole JR Jr: Diagnostic Procedures in Veterinary Bacteriology and Mycology V, New York, 1990, Academic Press.
7. Carter GR, Wise DJ: Essentials of Veterinary Bacteriology and Mycology,  ed 6, Ames IA, 2004, Iowa State Press.
8. Chandler FW, Watts JC: Pathologic Diagnosis of Fungal Infections, Chicago, 1987, ASCP  Press.
9. Foil CS: Fungal diseases. Clin Dermatol 12:529, 1994.
10.  Freedberg IM, Eisen AZ, Wolff K, et al: Fitzpatrick’s Dermatology in General Medicine, ed 6, New York, 2003, McGraw-Hill Book Co..
11. Greene CE. Infectious Diseases of the Dog and Cat, ed 3, Philadelphia, 2006, W.B. Saunders Co.
12. Gross TL, Ihrke PJ, Walder EJ: Skin Diseases of the Dog and Cat: Clinical   and   Histopathologic Diagnosis, Ames IA, 2005, Blackwell Science.
13.  Guzman-Chavez RE, Segundo-Zaragoza C, Cervantes-Olivares RA, et al: Presence of keratinophilic fungi with special reference to dermatophytes  on the haircoat of dogs and cats in Mexico and Nezahualcoyotl cities. Rev Latinoam Microbiol 42(1):41–44, 2000.
14. Holzworth J: Mycotic diseases. In Holzworth J, editor: Diseases of the Cat. Medicine and Surgery, Vol 1, Philadelphia, 1987, W.B. Saunders Co., p 320.
15. Kamoun S: Molebular genetics of pathogenic oomycetes. Eukaroyt Cell 2:191–199, 2003.
16. Kern ME, Blevins KS: Medical Mycology a Self-Instructional Text, ed 2, Philadelphia, 1985,F.A. Davis Company.
17. Kozak M, Bilek J, Beladicova V, et al: Study of the dermatophytes in dogs  and the risk of human infection. Bratisl Lek Listy 104(7–8):211–217, 2003.5
18. Kwon-Chung KJ, Bennett JE: Medical Mycology, Philadelphia, 1992, Lea & Febiger.
19. Larone DH: Medically Important Fungi a Guide to Identification, ed 4, Washington DC, 2002, ASM Press.
20. Moriello KA, DeBoer DJ: Fungal flora of the coat of pet cats. Am J Vet Res 52:602–606,1991.
21. Kac G: Molecular approaches to the study of dermatophytes. Med Mycol 38:329–362, 2000.
22. Philpot CM, Perry AP: The normal fungal flora of dogs. Mycopathologica 87:155–157,1984.
23. Romano C, Valenti L, Barbara R: Dermatophytes isolated from asymptomatic stray cats. Mycoses 40(11–12):471–472, 1997.
24. Sidhu RK, et al: Incidence of mycotic dermatitis in dogs. Indian Vet J  70:885, 1993.
25. Sierra P, et al: Fungal flora on cutaneous and mucosal surfaces of cats  infected with feline immunodeficiency virus or feline leukemia immunodeficiency virus or feline leukemia virus. Am J Vet Res 61:158, 2000.
26. Simpanya MF, Baxter M: Isolation of fungi from the pelage of cats and dogs using the hairbrush technique. Mycopathologia 134:129, 1996.
27. Patel A, Lloyd DH, Lamport AI: Survey of dermatophytes on clinically normal cats in the southeast of England. J Small Anim Pract 46(9):436–439, 2005.
28. Moriello KA, DeBoer DJ: Fungal flora of the haircoat of cats with and without dermatophytosis. J Med Vet Mycol 29:285–292, 1991.
29. Moriello KA, Kunkle GA, DeBoer DJ: Isolation of dermatophytes from the haircoats of stray cats from selected animal shelters in two different geographic regions in the United States. Vet Dermatol 5:57–62, 1994.
30. Saridomichelakis MN, et al: Recovery of Microsporum gypseum and Malassezia pachydermatis from the nasal bridge in various dog groups. Vet Rec 145:171,1999.
31. Scott DW, Miller WH, Griffin CE: Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology, ed 6, Philadelphia, 2001, W.B. Saunders Co.  
32. Sparkes A, Robinson A, MacKay A, et al: A study of the efficacy of topical and systemic therapy for the treatment of Microsporum canis infection. J Feline Med Surg 2:135–142, 2000.
33. DeBoer DJ, Moriello KA: Inability of two topical treatments to influence the course of experimentally induced dermatophytosis in cats. J Am Vet Med Assoc 207:52,1995.
34. Gupta AK, et al: Antifungal agents: An overview: Part II. J Am Acad Dermatol 30:911, 1994.
35. Kerl ME: Update on canine and feline fungal diseases. Vet Clin North Am Small Anim Pract 33:721–747, 2003.
36. Moriello KA: Treatment of feline dermatophytosis: Revised recommendations. Feline Pract 24(3):32, 1996.
37. Paterson S: Miconazole/chlorhexidine shampoo as an adjunct to systemic  therapy in controlling dermatophytosis in cats. J Small Anim Pract 40:163, 1999.
38. Moriello KA, DeBoer DJ: Environmental decontamination of Microsporum canis: In vitro studies using isolated infected cat hair. In Kwochka KW, et al, editors: Advances in Veterinary Dermatology III, Boston, 1998, Butterworth-Heinemann, p 309.
39. White-Weithers N, Medleau L: Evaluation of topical therapies for the treatment  of dermatophyte infected hairs from dogs and cats. J Am Anim  Hosp Assoc 31:250–253, 1995.
40. Grooters AM, Taboada J: Update on antifungal therapy. Vet Clin North Am Small Anim Pract 33:749–758, 2003.
41. Groll AH, Walsh TJ: Antifungal chemotherapy: advances and perspectives.  Swiss Med  Weekly 132:303–311, 2002.
42. Davidson AP, Pappagianis D: Treatment of nasal aspergillosis with topical clotrimazole. In Bonagura JD, editor: Kirk’s Current Veterinary Therapy XII,  Philadelphia PA, 1995, WB Saunders, pp 899–901.
43. Guillot J, Chermette R: Le traitment des mycoses des carnivores domestiques. Point Vйt 28:51, 1997.
44. Guillot J, Bensignor E, Jankowski F, et al: Comparative efficacies of oral ketoconazole and terbinafine for reducing Malassezia population sizes on the skin of basset hounds. Vet Dermatol 14:153–157, 2003.
45. Guillot J, Malandain E, Jankowski F, et al. Evaluation of the efficacy of oral lufenuron combined with topical enilconazole for the management of dermatophytosis in catteries. Vet  Rec 150:714–718, 2002.
46. Gupta AK, et al: Antifungal agents: An overview: Part I. J Am Acad Dermatol 30:677, 1994.
47. Schmidt A: In vitro activity of clemizole, clotrimazole, and silversulfadiazine  against  isolates of Malassezia pachydermatis. J Vet Med B 44:193, 1997.
48. Carney HC, Moriello KA: Dermatophytosis: Cattery management plan. In Griffin CE, et al, editors: Current Veterinary Dermatology, St. Louis, 1993,  Mosby-Year Book, p 34.
49. Casadevall A, Pirofski L-A: Adjunctive immune therapy for fungal infections. Clin Infect Dis 33:1048–1056, 2001.
50. DeBoer DJ, Moriello KA: Clinical update on feline dermatophytosis—part II. Compend Contin Educ 17:1471, 1995.
51. De Jaham C, et al: Enilconazole emulsion in the treatment of dermatophytosis  in Persian cats: Tolerance and suitability. In Kwochka KW, et al,  editors: Advances in Veterinary Dermatology III, Boston, 1998, Butterworth- Heinemann, p 299.
52. Hnilica KA, Medleau L: Evaluation of topically applied enilconazole for  the treatment of dermatophytosis in a Persian cattery. Vet Dermatol  13:23–28, 2002.
53. Moriello KA, Varbrugge M: Use of isolated infected spores to determine  sporicidal efficacy of two commercial antifungal rinses against Microsporum   canis. Vet Dermatol 18:55–58, 2007.
54. Medleau L, Greene C, Rakich P: Evaluation of ketoconazole and itraconazole for treatment of disseminated cryptococcosis in cats. Am J Vet Res  51:1454–1458, 1990.
55. Carlotti DN: Traitement des teignes chez le chat. Point Vйt 29:681, 1998.
56. Dismukes WE: Introduction to antifungal drugs. Clin Infect Dis 30:653– 657, 2000.
57. Bernard EM, Armstrong D: Treatment of opportunistic fungal infections: clinical overview and perspective. Int J Infect Dis 1(Suppl 1):528–531, 1997.
58. Krohne SG: Canine systemic fungal infections. Vet Clin North Am Small Anim Pract         30:1063–1090, 2000.
59. Fernandez-Torres B, Carrillo AJ, Martin E, et al: In vitro activities of 10 antifungal drugs against 508 dermatophyte strains. Antimicrob Agents Chemother 45:2524–2538, 2001.
60. Fielding RM, Singer AW, Wang LH: Relationship of pharmacokinetics and drug distribution in tissue to increased safety of amphotericin B colloidal dispersion in dogs. Antimicrob Agents Chemother 36:299–307, 1992.
61. Mancianti F, Pedonese F, Millanta F, et al: Efficacy of oral terbinafine in  feline dermatophytosis due to Microsporum canis. J Feline Med Surg  1:37–41, 1999.
62. Rochette F, Engelen M, Vanden Bossche H: Antifungal agents of use in  animal health-practical applications. J Vet Pharmacol Therap 26:31–53,  2003.
63. Hill PB, et al: A review of systemic antifungal agents. Vet Dermatol 6:59,1995.
64. Scott DW, et al: Teratogenesis in cats associated with griseofulvin therapy.  Teratology 11:79, 1975.
65. Shelton GH, et al: Severe neutropenia associated with griseofulvin  therapy in cats with feline immunodeficiency virus infection. J Vet Int Med  4:317, 1990.
66. Levy JK: Ataxia in a kitten treated with griseofulvin. J Am Vet Med Assoc 198:105–106, 1991.
67. Helton KA, et al: Griseofulvin toxicity in cats: Literature review and report of seven cases. J Am Anim Hosp Assoc 22:453, 1986.
68. 68. Kunkle GA, Meyer DJ: Toxicity of high doses of griseofulvin in cats. J Am  Vet Med Assoc 191:322, 1987.
69. Mitchell F, et al: Griseofulvin: Immunosuppressive action. Proc Soc Exp Biol Med 143:165, 1973.
70. Boothe DM: Small Animal Clinical Pharmacology and Therapeutics, Philadelphia, 2001, W.B. Saunders Company.
71. D’Arcy P, et al: The anti-inflammatory action of griseofulvin in experimental  animals. J Pharm Pharmacol 12:659, 1960.
72. Tamaki K, et al: Differential effect of griseofulvin on interferon-induced  HLA-DR and  intercellular adhesion molecule-1 expression of human  keratinocytes. Br J Dermatol 127:258, 1992.
73. de Jaham C, Paradis M, Papich MG: Antifungal dermatologic agents:  azoles and allylamines. Compend Contin Educ Pract Vet 22:548–566, 2000.
74. De Keyser H, Van Den Brande M: Ketoconazole in the treatment of dermatomycosis in cats and dogs. Vet Quart 5:142–144, 1983.
75. Perfect JR, Marr KA, Walsh TJ, et al: Voriconazole treatment for lesscommon emerging or refractory fungal infections. Clin Infect Dis 36:1122– 1131, 2003.
76. Roffey SJ, Cole S, Comby P, et al: The disposition of voriconazole in mouse, rat, rabbit, guinea pig, dog, and human. Drug Metab Dispos 31:731–741, 2003.
77. deDoncker P, et al: Antifungal pulse therapy for onychomycosis. Arch Dermatol 132:34–41,1996.
78. Pinchbeck LR, Hillier A, Kowalski JJ, et al: Comparison of pulse administration versus once daily administration of itraconazole for the treatment  of Malassezia pachydermatis dermatitis and otitis in dogs. J Am Vet Med Assoc 220:1807–1812, 2002.
79. Scher RK: Onychomycosis: Therapeutic update. J Am Acad Dermatol 40:S21, 1999.
80. Gupta AK, et al: Drug interactions with intraconazole, fluconazole, and  terbinafine and their management. J Am Acad Dermatol 41:237, 1999.
81. Borgers M, Van den Bossche H, De Brabander M: The mechanisms  of action of the new antimycotic ketoconazole. Am J Med 74(1B):2–8,1983.
82. Willard MD, et al: Ketoconazole-induced changes in selected canine hormone concentrations. Am J Vet Res 47:2504, 1986.
83. Loose DS, Kan PB, Hirst MA, et al: Ketoconaozle blocks adrenal sterioidogenesis  by inhibiting cytochrome P450-dependent enzymes. J Clin  Invest 71:1495–1499, 1983.
84. Van Cutsem J, et al: The anti-inflammatory effects of ketoconazole. J Am Acad Dermatol 25:257, 1991.
85. Yamaguchi H, et al: Immunomodulatory activity of antifungal drugs. Ann N Y Acad Sci 685:447, 1993.
86. Angarano D, Scott D: Use of ketoconazole in treatment of dermatophytosis in a dog. J Am vet Med Assoc 190:1433–1434, 1987.
87. Heit MC, Riviere JE: Antifungal therapy: Ketoconazole and other azole derivatives.  Compend Contin Educ 21, 1995.
88. Martin S. Itraconazole. Compend Contin Educ Pract Vet 21:145–147, 1999.
89. Boothe DM, et al: Itraconazole disposition after single oral and intravenous and multiple oral dosing in healthy cats. Am J Vet Res 58:872, 1997.
90. Mancianti F, et al: Itraconazole susceptibility of feline isolates of Microsporum canis. Mycoses 40:313, 1997.
91. Mancianti F, Pedonese F, Zullino C: Efficacy of oral administration of itraconazole to cats  with dermatophytosis caused by Microsporum canis. J Am Vet Med Assoc 213:993–995,1998.
92. Medleau L, Jacobs GJ, Marks MA: Itraconazole for the treatment of  cryptococcosis in cats. Vet Intern Med 9:39–42, 1995.
93. Ward H: Itraconazole for the treatment of histoplasmosis in cats. J Vet Intern Med 9:39–42, 1994.
94. Werner AH, Werner BE. Feline sporotrichosis. Compend Contin Educ Pract Vet 15:1189–1225, 1993.
95. Kumar B, Kaur I, Chakrabarti A, et al: Treatment of deep mycoses with  itraconazole. Mycopathologia 115:169–174, 1991.
96. Legendre AM, Rohrbach BW, Toal RI, et al: Treatment of blastomycosis with itraconazole in 112 dogs. J Vet Int Med 10:365–371, 1996.
97. Leitner MI, Meingassner JG: The efficacy of orally applied terbinafine,  itraconazole and fluconazole in models of experimental trichophytoses.  J Med Vet Mycol 32:181–188, 1994.
98. Colombo S, Cornegliani L, Verecelli A: Efficacy of itraconazole as a  combined continuous/pulse therapy in feline dermatophytosis: preliminary results in nine cases. Vet Dermatol 12:347–350, 2001.
99. Nichols PR, Morris DO, Beale KM: A retrospective study of canine and feline cutaneous vasculitis. Vet Dermatol 12:255–264, 2001.
100. Plotnick AN, Boshoven EW, Rosychuk RAW: Primary and cutaneous coccidioidomycosis and subsequent drug eruption to itraconazole in a dog. J Am Anim Hosp Assoc 33:139–143,1997.
101. Craig AJ, et al: Pharmacokinetics of fluconazole in cats after intravenous and oral administration. Res Vet Sci 57:372, 1994.
102. Faergemann J: Pharmacokinetics of fluconazole in skin and nails. J Am  Acad Dermatol 40:S14, 1999.
103. Vaden SL, Heit MC, Manaugh C, et al: Fluconazole in cats: Pharmacokinetics following intravenous and oral administration and penetration into   cerebrospinal fluid, aqueous humour, and pulmonary epithelial lining  fluid. J Vet Pharmacol Therap 20:181–186, 1997.
104. Malik R, Wigney DI, Muir DB, et al: Cryptococcosis in cats: clinical and  mycological assessment of 29 cases and evaluation of treatment using  orally administered fluconazole. J Med Vet Mycol 30:133–134, 1992.
105. Tiches D, Vite C, Dayrell-Har TB, et al: A case of canine central nervous  system cryptococcosis: management with fluconazole. J Am Anim Hosp Assoc 34:145–151, 1998.
106. Thorpe JE, Baker N, Bromet-Petit M: Effect of oral antacid administration on the  pharmacokinetics of oral fluconazole. Antimicrob Agents Chemother 34:2032–2033, 1990.
107. Maia ML, Dos Santos JI, Viani FC, et al: Phenotypic characterization of Microsporum canis isolated from cats and dogs. Mycoses 44:480–486, 2001.
108. Sparkes AH: Terbinafine in cats: a pharmacokinetic study. In Proceedings of the Third World Congress of Veterinary Dermatology, Edinburgh, Scotland, UK, 1996, pp 37–43.
109. Castanon-Olivares LR, Manzano-Gayosso P, Lopez-Martinez R, et al: Effectiveness of terbinafine in the eradication of Microsporum canis from laboratory cats. Mycoses 44:95–97, 2001.
110. Hofbauer B, Leitner I, Ryder NS: In vitro susceptibility of Microsporum canis and other dermatophyte isolates from veterinary infections during therapy with terbinafine or griseofulvin. Med Mycol 40:179–183, 2002.
111. Kotnik T: Drug efficacy of terbinafine hydrochloride (Lamisil) during oral treatment of cats, experimentally infected with Microsporum canis. J Vet Med B Infect Dis Vet Public Health 49:120–122, 2002.
112. Kotnik T, Kozuh Erzen N, Kuzner J, et al: Terbinafine hydrochloride treatment of Microsporum canis experimentally-induced ringworm in cats. Vet  Microbiol 83:161–168, 2001.
113. Chen C: Personal communication, 1997.
114. Malik R, Medeiros C, Wigney DI: Suspected drug eruption in 7 dogs  during administration    of flucytosine. Aust Vet J 74:285–288, 1996.
115. Plotnick AN: Lipid-based formulations of amphotericin B. J Am Vet Med  Assoc 216:838, 2000.
116. Bekersky I, Boswell GW, Hiles R, et al: Safety and toxicokinetics of intravenous  liposomal amphotericin B (AmBiosome) in beagle dogs. Pharm Res 16:1694–1701, 1999.
117. Krawiec DR, McKiernan BC, Twardock AR, et al: Use of amphotericin B lipid complex for treatment of blastomycosis in dogs. J Am Vet Med Assoc 209:2073–2075, 1996.
118. Wolf AM, Troy GC: Deep mycotic diseases. In Ettinger SJ, Feldman EC, editors: Textbook of Internal Medicine IV, Philadelphia, 1995, W.B. Saunders  Co., p 439.
119. Malik R, Craig AJ, Wigney DI, et al: Combination chemotherapy of canine  and feline cryptococcosis using subcutaneously administered amphotericin  B. Aust Vet J 73:124–128,1996.
120. Ben-Ziony Y, Arzi B: Use of lufenuron for treating fungal infections of dogs  and cats: 297 cases (1997-1999). J Am Vet Med Assoc 217:1510–1513, 2000.
121. Ben-Ziony Y, Arzi B: Updated information for treatment of fungal infections in cats and dogs. J Am Vet Med Assoc 218:1718, 2001. 
122. DeBoer D, Moriello K: Efficacy of pre-treatment with lufenuron for prevention of Microsporum canis infection in a feline cohabitant challenge model. Vet Dermatol 13:215, 2002.
123. Moriello KA, DeBoer DJ, Schenker R, et al: Efficacy of pre-treatment with lufenuron for  the prevention of Microsporum canis infection in a feline direct topical challenge model. Vet  Dermatol 15:357–362, 2004.
124. Zur G, Elad D: In vitro and in vivo effects of lufenuron on dermatophytes isolated from cases of canine and feline dermatophytosis. J Vet Med B Infect Dis Public Health 53:122–125, 2006.
125. Chaparas SD, Morgan PA, Holobaugh P, et al: Inhibition of cellular immunity  by products of Aspergillus fumigatus. J Med Vet Mycol 24:67–76,1986.
126. Nemunaitis J: Use of macrophage colony-stimulating factor in the treatment of fungal infections. Clin Infect Dis 26:1279–1281, 1998.
127. Stevens DA: Combination immunotherapy and antifungal chemotherapy. Clin Infect Dis 26:1266–1269, 1998.
128. Hensel P, Greene CE, Medleau L, et al: Immunotherapy for treatment of multicentric cutaneous pythiosis in a dog. J Am Vet Med Assoc 223:197, 215–218, 2003.
129. DeBoer DJ, Moriello KA: The immune response to Microsporum canis induced by a fungal cell wall vaccine. Vet Dermatol 5:47, 1994.
130. DeBoer DJ, Moriello KA: Investigations of a killed dermatophyte cell-wall vaccine against infection with Microsporum canis in cats. Res Vet Sci 59:1100, 1995.
131. DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JF, et al: Safety and immunologic effects after inoculation of inactivated and combined live-inactivated dermatophytosis vaccines in cats. Am J Vet Res 63:1532–1537, 2002.
132. Sparkes AH, et al: Epidemiological and diagnostic features of canine  and feline dermatophytosis in the United Kingdom. Vet Rec 133:57, 1993.
133. Blakemore JC: Dermatomycosis. In Kirk RW, editor: Current Veterinary Therapy V,  Philadelphia, 1974, W.B. Saunders Co., p 422.
134. Foil CS: Dermatophytosis. In Griffin CE, et al, editors: Current Veterinary Dermatology, St. Louis, 1993, Mosby-Year Book, p 22.
135. Lewis DT, et al: Epidemiology and clinical features of dermatophytosis in dogs and cats at Louisiana State University: 1981–1990. Vet Dermatol 2:51, 1991.
136. Sidhu RK, et al: Incidence of mycotic dermatitis in dogs. Indian Vet J 70:885, 1993.
137. Carlotti DN, Bensigner E: Dermatophytosis due to Microsporum persicolor (13 cases) or Microsporum gypseum (20 cases) in dogs. Vet Dermatol 10:17, 1999.
138. Reberg SR, et al: Dermatophytosis in shelter cats in northeastern Indiana: A survey of disease prevalence and the influence of shelter management  practices. Proc Annu Memb Meet Am Acad Vet Dermatol Am Coll Vet Dermatol 15:39, 1999.
139. Kaplan W, Ivens MS: Observations on seasonal variations in incidence of ringworm in dogs and cats in the U.S.A. Sabouraudia 1:91, 1961.
140. Bourdeau P, et al: Quelques formes rares de dermatomycoses des carnivores domestiques. 2e cas: Dermatite generalisee du chien due a une infection mixte par Microsporum persicolor et a Microsporum gypseum. Point Vйt 14:69, 1983.
141. Bourdeau P, Chermette R: Formes rares de dermatomycoses des carnivores. IIIe cas: Dermatite localisee du chien due a une infection mixte  par Trichophyton mentagrophytes et Trichophyton erinacei. Point Vйt 19:619, 1987.
142. Bussieras J, et al: Quelques formes rares de dermatomycoses des carnivores domestiques.1er cas: Dermatite generalisee du chien, due a une infection mixte par Microsporum canis et par Trichophyton mentagrophytes. Point Vйt 13:43, 1982.
143. Cano J, Rezusta A, Sole M, et al: Inter-single-repeat-PCR typing as a new tool for identification of Microsporum canis strains. J Dermatol Sci 39:17– 21, 2005.
144. Graser Y, Kuijpers AFA, El Fari M, et al: Molecular and conventional taxonomy of the Microsporum canis complex. Med Mycol 38:143–153, 2000.
145. Kac G, Bougnoux ME, Feuilhade de Chauvin M, et al: Genetic diversity among Trichophyton mentagrophytes isolates using random amplified polymorphic DNA method. Brit J Dermatol 140:839–844, 1999.
146. Kano R, Hirai A, Muramatsu M, et al: Direct detection of dermatophytes in skin samples based on sequences of the chitin synthase 1 (CHS1) gene. J Vet Med Sci 65:267–270, 2003.
147. Ninet B, Jan I, Bontems O, et al: Identification of dermatophyte species by 28S ribosomal DNA sequencing with a commercial kit. J Clin Microbiol 41:826–830, 2003.
148. Moriello KA: Management of dermatophyte infections in catteries and  multiple-cat households. Vet Clin North Am Small Anim Pract 20:1457, 1990.
149.  Sparkes AH, et al: Microsporum canis: Inapparent carriage by cats and the viability of arthrospores. J Small Anim Pract 35:397, 1994.
150. Mancianti F, Papini R: Isolation of keratinophilic fungi from the floors of private veterinary clinics in Italy. Vet Res Commun 20:161, 1996.
151. DeBoer DJ, Moriello KA: Clinical update on feline dermatophytosis—part  I. Compend Contin Educ 17:1197, 1995.
152. DeJaham C, Paradis M: La dermatophyte feline I: Etiopathogenie, aspects cliniques et principes diagnostiques. Mйd Vйt Quйbec 27:141, 1997.
153. Mignon BR, Losson BJ: Prevalence and characterization of Microsporum canis carriage in cats. J Med Vet Mycol 35:249, 1997.
154. Okuda C, et al: Fungus invasion of human hair tissue in tinea capitis     caused by  Microsporum canis: Light and electron microscopic study. Arch Dermatol Res 281:238,  1989.
155. DeBoer DJ, Moriello KA: Development of an experimental model of  Microsporum canis infection in cats. Vet Microbiol 42:289, 1994.
156. Sparkes AH, et al: Acquired immunity in experimental feline Microsporum  canis infection. Res Vet Sci 61:165, 1996